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本制品用于蛋白凝胶考马斯亮蓝染色后凝胶的脱色。本脱色液可以和考马斯亮蓝染色液(货号：RFT551)配套使用。使用本脱色液进行脱色，采用常规脱色方法至少脱色1小时可以观察到蛋白条带；采用快速脱色方法不足20分钟即可观察到蛋白条带。观察到最清晰的蛋白条带则需脱色更长时间。本脱色液经过改良，不含有毒的甲醇，但含有刺激性气味的乙酸。

• 电泳结束后，取凝胶放入适量考马斯亮蓝染色液中，确保染色液可以充分覆盖凝胶。
  
• 置于水平摇床或侧摆摇床上缓慢摇动，室温染色1小时或更长时间。
  注：具体的染色时间取决于凝胶的厚度和染色时的温度。凝胶较厚，温度较低，则染色时间宜适当延长。凝胶较薄，温度较高，则染色时间可以适当缩短。通常染色至凝胶的颜色和染色液的颜色非常接近，在染色液中几乎看不清凝胶时，可以认为已染色充分。染色2～4个小时或更长时间不会对最终的染色效果产生负面影响。
  
• 倒出染色液。染色液可以回收重复使用至少2～3次。
  
• 加入适量脱色液，确保脱色液可以充分覆盖凝胶。
  注：脱色液可以使用考马斯亮蓝脱色液；如果希望自行配制，推荐的脱色液配方为：40%乙醇，10%乙酸，50％蒸馏水。
  
• 置于水平摇床或侧摆摇床上缓慢摇动，室温脱色4～24小时。期间更换脱色液2～4次，直至蓝色背景基本上全部被脱去，并且蛋白条带染色效果达到预期。通常蛋白条带在脱色1～2小时后即可出现。
  注：脱色期间可以在脱色液中加入一片吸水纸，可以使部分染料吸附在吸水纸上，加快脱色。脱色时间过长也会导致蛋白条带的颜色变浅。
  
• 完成脱色后，可以把凝胶保存在水中，用于后续的拍照等。保存在水中的凝胶会发生溶涨。如需避免溶涨，可以把胶保存在含20%甘油的水中。长期保存可以制备干胶。

• 电泳结束后，取胶放入适量考马斯亮蓝染色液中，微波炉加热至接近沸腾或刚刚沸腾，立即停止加热。通常对于胶浓度大于10％的胶比较坚韧，在发生煮沸时不易破损；对于胶浓度小于10%的胶，宜尽量避免煮沸，以免出现胶碎裂的情况。
  
• 随后在染色液温度较高的情况下，在室温摇床上摇动5～10分钟。
  
• 倒出染色液。染色液可以回收重复使用至少2～3次。
  
• 加入适量脱色液，确保染色液可以充分覆盖凝胶。
  注：脱色液可以使用考马斯亮蓝染色脱色液；如果希望自行配制，推荐的脱色液配方为：40%乙醇，10%乙酸，50％蒸馏水。
  
• 微波炉加热至接近沸腾或刚刚沸腾，立即停止加热。
  
• 随后在脱色液温度较高的情况下，在摇床上摇动5～10分钟。此时通常可以观察到比较清楚的蛋白条带。
  
• 更换新鲜的脱色液，重复步骤5和步骤6，直至蓝色背景基本上全部被脱去，蛋白条带染色效果达到预期。
  
• 完成脱色后，可以把凝胶保存在水中，用于后续的拍照等。保存在水中的凝胶会发生溶涨。如需避免溶涨，可以把胶保存在含20%甘油的水中。长期保存可以制备干胶。